HO CHI MINH CITY JOURNAL OF MEDICINE
banner

XÁC ĐỊNH SỰ HIỆN DIỆN DNA THAI TỰ DO TRONG MÁU MẸ BẰNG KỸ THUẬT MSP KẾT HỢP TẠO DÒNG GIẢI TRÌNH TỰ

IDENTIFICATION THE CIRCULATING FREE FETUS DNA IN MATERNAL BLOOD BY USING MSP COMBINES CLONING AND SEQUENCING TECHINIQUES.

Bấm tải bài viết

Tạp chí Y học Thành phố Hồ Chí Minh, 22(4):368. DOI

Lượt xem: 212 Lượt tải PDF: 8

Tác giả

Lương Bắc An*,***, Lê Thị Xuân Thảo*, Nguyễn Khắc Hân Hoan**, Lê Quang Thanh**, Đỗ Thị Thanh Thủy*.

Tóm tắt

Mở đầu: Phân tích DNA thai tự do (cffDNA) trong máu mẹ không chỉ hữu ích trong sàng lọc tiền sản không xâm lấn (NIPS) một số bất thường lệch bộ nhiễm sắc thể như T21, T18, T13 mà còn hữu ích trong tầm soát một số bất thường liên kết giới tính, nhóm máu rhesus D (RhD), b-thalassemia, tăng sản tuyến thượng thận bẩm sinh, loạn dưỡng cơ.... Tất cả những xét nghiệm này đều tập trung vào phát hiện những trình tự bất thường của thai nhi được di truyền từ bố mẹ. Thai nhi có thừa hưởng những trình tự bất thường hay không được xác định bằng cách phân tích cffDNA trong huyết tương thai phụ. Tuy nhiên, kết quả không phát hiện các trình tự bất thường có thể bị tác động bởi các yếu tố như hàm lượng cffDNA quá thấp hoặc cffDNA bị thoái hoá và thất thoát trong quá trình xử lí mẫu. Chính vì vậy, cần có một dấu ấn xác định sự hiện diện của cffDNA trong huyết tương thai phụ cho phép kiểm soát các trường hợp âm tính giả.

Mục tiêu: Xác định sự hiện diện của cffDNA thông qua sự khác biệt trạng thái methyl hoá vùng promoter gen RASSF1A

Phương pháp: Nghiên cứu mô tả cắt ngang. Tách chiết cfDNA (DNA tự do) từ mẫu huyết tương của thai phụ. Mẫu cfDNA được xử lí bisulfite trước khi thực hiện phản ứng methylation specific PCR (MSP) để phát hiện cffDNA trong máu mẹ. Tạo dòng trình tự DNA của thai và DNA của mẹ vào vector. Giải trình tự xác định các vị trí C-methyl hoá trong DNA thai.

Kết quả: Phát hiện được sự hiện diện cffDNA trong máu mẹ thông qua sự methyl hoá promoter gen RASSF1A. Tạo dòng thành công vector chứa trình tự DNA của thai và vector chứa trình tự DNA của mẹ. Kết quả giải trình tự cho thấy toàn bộ 14 vị trí C-methyl hoá trên vùng trình tự DNA của thai đều ở trạng thái methyl hoá.

Kết luận: Methyl hoá vùng promoter gen RASSF1A được xem là một dấu ấn để phát hiện sự tồn tại của cffDNA. Dấu ấn này cho phép phát hiện được những kết quả âm tính giả trong các sàng lọc không xâm lấn sử dụng cffDNA để phân tích.

Từ khóa: Methylation, RASSF1A, methylation specific PCR (MSP), cfDNA, cffDNA.

Abstract

Introduction: Circulating fetal DNA analysis in maternal plasma is useful in the non-invasive prenatal screening (NIPS) not only the detection of aneuplodies but also identification of sex-linked disorders, fetal rhesus D (RhD), B-thalassemia and aneuplodies. Many of these applications focus on the detection of paternally inherited disease-causing sequences in maternal plasma. Whether the fetus has inherited such a sequence is inferred by the presence or absence of the target sequence in maternal plasma, but the absence of such a sequence in maternal plasma could alternatively be a result of low cffDNA concentrations or cffDNA loss during samples processing. Thus, the availability of a positive control confirming the presence of fetal DNA in the sample would be avoided false-negative results.

Objectives: Identification of cffDNa in maternal blood through differently methylation status of RASSF1A promoter.

Methods: A cross-sectional study. CfDNA were extracted, then were treated bisulfate. MSP was carried out to detect cffDNA in maternal plasma. Cloning and sequencing the MSP products to identify the C-methylation bases.

Results: we identified the presentation of fetal DNA in maternal blood through methylation of RASSF1A promoter. We have successfully cloned the fetal DNA and maternal DNA into vector. All 14 CpG sites was absolute methylation in fetal DNA sequence.

Conclusions: Hypermethylation RASSF1A is a universal marker for fetal DNA and is readily detectable in maternal plasma. This marker allows the detection of false-negative results when applied to NIPS.

Key words: Methylation, RASSF1A, methylation specific PCR (MSP), cfDNA, NIPS.